PCR实验代测，PCR实验设计，PCR实验-安徽华远
多聚酶链式反应(Polymerase Chain Reaction, PCR)是美国 Perkin-Elmer/Cetus公司人类遗传研究室Mullis K. B.等人于1985年发明的一种快速体外DNA片段扩增技术，是八十年代分子生物学资源领域的一项革命性突破，被誉为分子生物学资源发展史上的又一里程碑。该技术一问世，就在分子生物学、医学、生物工程、法医学、考古学等领域得到快速而广泛的应用，并且对已建立的基因克隆、DNA序列分析等现代分子生物学技术的发展也起了巨大的推动作用。
PCR技术是一种模拟自然DNA复制过程的体外酶促合成特异性核酸片段技术(亦称无细胞分子克隆技术)。它以待扩增的两条DNA链为模板，由一对人工合成的寡核苷酸作为介导，通过DNA聚合酶促反应，在体外进行特异DNA序列扩增。其过程包括模板变性(denature)、引物退火(annealing)和用DNA聚合酶延伸(clongation)退火引物在内的重复循环系列，使末端被引物5’端限定的特异性片段成指数形式累积。由于在每一循环中合成的引物延伸产物可作为下一循环中的模板，因而每次循环中靶DNA的拷贝数几乎呈几何级数增长。因此20次PCR循环将产生约一百万倍(220)的扩增产物，具有操作简单、快速、灵敏度高、特异性强的特点，并且具有从DNA粗制品和降解的 DNA模板中扩增靶序列的能力，这一点在生药鉴定应用中尤为重要。
PCR的原理类似于DNA的天然复制过程，关键是运用两个起始引物，分别为待扩增序列的相对的两条单链DNA结合，结合位点分别位于待扩增序列的两端，并且3’端相对，然后利用DNA聚合酶依赖于DNA模板的特性，模仿体内的复制，在两个引物之间诱发聚合酶反应。PCR反应可以简述如下：
在微量离心管中加入适量缓冲液，加微量模板DNA，四种脱氧单核苷酸(dNTP)，耐热Taq聚合酶及两个合成DNA引物，并有Mg2+存在。
1、加热使模板DNA在高温下(95℃左右)变性，双链DNA解开而变成单链DNA游离于溶液中。这是所谓变性阶段。
2、PCR的引物是两段人工合成的寡核苷酸链，长度为16-24个核苷酸残基，其顺序由被扩增的DNA片段两端的序列决定。这两段寡核苷酸 链分别与模板DNA的正链和负链互补，所互补的位点一个在被扩增序列的“上游”，一个在被扩增序列的“下游”。高温使模板DNA变性成单 链以后，温度降低，由于PCR反应体系中引物的拷贝数远远多于模板DNA的拷贝数，因而引物与模板 DNA形成复合物的机率要大大高于 模板DNA两条单链的重新结合。只要严格地控制复性的条件，复性过程是倾向于形成引物与模板的复合物的。这是退火阶段。
3、溶液反应温度升至中温(72℃)，在Taq酶作用下，以dNTP为原料，引物为复制起点，模板DNA的一条双链在解链和退火之后延伸为两 条双链。这是延伸阶段。
如此重复，改变反应温度，即高温变性，低温退火，中温延伸三个阶段。这三次改变温度为一个循环。每循环一次，使特异区段基因拷贝数扩大一倍，一般30次循环，基因放大数可达2n倍。可用公式
Y=(1+X)n
表示，式中Y=DNA扩增倍数，X=扩增效率，循环数为n。
如X=100%，n=20时，Y=1048576倍。但实际扩增效率(X)不会达到 100%。
2 试验条件
本程序适用于自动PCR操作，可适用于大多数情况，所用酶是不含核酸外切酶活性的热稳定聚合酶，如Taq聚合酶等。
引物(各50pmol)
0.2mmol/L dNTPs(必须使用高质量的dNTPs，这一点非常重要。dNTPs经反复化冻后会发生降解，因此应分成小份保存。应注意混合物中四种dNTP的量要相等)
模板DNA：约0.05～1mg基因组DNA或0.002～0.02mg质粒DNA
Taq DNA聚合酶(Perkin Elmer, Norwalk, Connecticut)
10×PCR缓冲液(500mmol/L KCl，15mmol /L MgCl2，100mmol/L Tris·HCl，pH 8.3)
矿物油
电泳所需试剂
【仪器设备】
PCR扩增仪
电泳装置
微量离心机
微量移液器(1～20ml和20～200ml)
0.5ml Eppendorf 管
紫外线观察装置及照相设备
2.2.2.3 操作程序
1.在无菌的Eppendorf管内加入以下反应物：
2.93℃ 反应2 min后开始以下循环：
93℃变性反应1 min;
50℃退火反应1 min;
72℃延伸反应3 min。
经过17～35循环后，最后一个循环72℃增加5 min。循环结束后反应产物置于40℃保存。
3.取1～5ml反应产物走凝胶电泳，经溴化乙锭染色检测扩增的情况。
2.2.2.4 应注意的问题及其解决方法
1.PCR反应条件的优化
要优化特定的PCR反应，有必要试用不同的反应组分和循环参数。表2-1列出了添加或改变某一试剂浓度对反应结果的影响，从中大家可以得到一些线索以改进反应条件，提高PCR产量和/或特异性，一般情况下，只须改变一两个参数就行了，如pH值和MgCl2浓度。表2-2给出了循环参数对PCR结果的影响。
表2-1 PCR各反应组分浓度对产物特异性和产量的影响
反应组分提高产量提高特异性
模板浓度增加减少
引物浓度高至75 pmol低至15 pmol
引物长度-增加
dNTPs各1 mmol/L各20 mmol/L
Tris-HCl (10 mmol/L pH8)pH高至10*pH高至10*
MgCl2高至4 mmol/L1.5 mmol/L
DMSO-10%**
甘油-2%
甲酰胺-5%
Taq DNA聚合酶***高至5U0.5U
效果可能不可预测
添加10% DMSO时，Taq DNA聚合酶的活性会被抑制47%，因此反应加大Taq DNA聚合酶的用量(即5U)予以补偿
Perkin Elmer, Norwalk, Connecticut
表2-2 可改变以提高PCR产物的特异性和/或产量的循环参数
反应条件提高产量提高特异性
循环数最多35个减至25个
变性*增至1 min-
引物退火**降至45℃升至72℃
引物延伸***在后期循环中延长维持30s
使用基因组DNA作模板时，开始几个循环变性应于97℃进行
假定Tm值为60℃
延伸时间依产物大小而定：1000bp的产物延伸30s即可，产物更长时，按每1000 bp延伸0.5 min计，在后期循环中增加延伸时间可以提高扩增效率
2.引物的设计
毫无疑问，引物的碱基组成，长度及其靶序列的同源性是决定PCR成败的首要因素，选择设计引物在一定程度上仍然要靠经验，对于某一对引物而言尚无通用的规则可严，但应遵守以下原则：
(1)一般性原则：
①长度：15～30bp，其有效长度 [Ln=2 (G+C)+(A+T)] 一般不大于38，否则PCR的最适延伸温度会超过Taq酶的最佳作用温度(74℃)，从而降低产物的特异性。
②G+C含量：应在45%～55%之间，PCR扩增中的复性温度一般是较低Tm值引物的Tm值减去5～10度。引物长度小于20时，其Tm值等于4×(G+C)+2×(A+T)。
③ 碱基分布的随机性：应避免连续出现4个以上的单一碱基。尤其是不应在其3’端出现3个的连续的G或C，否则会使引物在G+C富集序列区错误引发。
④ 引物自身：不能含有自身互补序列，否则会形成发夹样二级结构。
⑤引物之间：两个引物之间不应有多于4个的互补或同源碱基，不然会形成引物二聚体，尤应避免3’端的互补重叠。
⑥特异性：与非特异扩增序列的同源性应小于70%，或少于连续8个的互补碱基。
(2)引物的3’端：
引物的3’端很大程度上影响Taq酶的延伸效应，除特殊情况(AS-PCR)外，3’端不应发生错配。S. Kwok等发现，引物的3’端发生错配时，A:A使产量下降至1/20，A:G或C:C下降至1/100。当末位碱基是T时，即使错配也能引发链的合成，而为A时错配的引发效率最低，G、C居间。
因此，引物的3’端碱基最好选用A、G、C，而尽可能地避免选用T，尤应避免连续出现2个以上的T。
此外，如果扩增编码区域，引物的3’端不要终止于密码子的第3位，因此处易发生简并，从而影响扩增特异性。
(3)避开引物的二级结构区：
某些引物无效的原因是引物重复区二级结构的影响，因此选择扩增片段时应注意避开二级结构区，有些计算机软件可帮助确定该区域，如不能避开，则可用7- deaza-2’-脱氧GTP取代dGTP，有助于PCR成功。
目前在引物选择中已广泛应用计算机软件，从EMBL或Genebank中查找有关基因序列，并依据上述原则对所选用引物进行评价。
3.出现异常结果时的解决思路
在做PCR反应的过程中，由于其酶促反应的本质，影响最终结果的因素较多，所以出现一些非预料的结果是可以理解的。下面简单地总结一下在PCR反应结果出现异常时我们应该采取的措施。
(1)电泳检查没有 PCR产物
a.需检查一下Taq DNA聚合酶是否失活，或是活性太低，还需查一下在加样过程中是否向体系中加过Taq DNA聚合酶;
b.需检查一下所使用的引物，看其序列设计是否正确，是否碱基组成不平衡;
c.需要检查一下PCR反应过程中模板是否变性充分，尤其在前几个循环中是否变性充分;可以适当地提高模板变性的温度或是适当延长变性的时间;
d.需检查一下在PCR反应体系中是否有Taq DNA聚合酶的抑制剂，如SDS污染等等;
e.需检查一下模板中是否有蛋白酶和核酸酶的污染，可以预先加热使之失活。
(2)电泳检查出现引物二聚体区带
a.需检查一下两个引物的3’端是否互补，或者是否有相类似的回文结构;
b.需检查一下使用的引物是否太短，可以予以适当的延长;
c.需检查模板的用量，模板以10-4个拷贝为最佳，模板太少会造成引物相对过量;
d.适当地降低引物的浓度，引物浓度过高是出现引物二聚体的最主要原因;
e.循环次数太多也易形成引物二聚体，可以适当地减少循环数;
f.可以将复性温度提高一些以减少引物二聚体形成。
(3)电泳检测PCR产物呈片状(smear)
a.需检查一下Taq DNA聚合酶的用量，适当地减少Taq酶的量有助于特异性条带扩增;
b.可以提高反应的退火温度，或者直接采用两个温度的PCR(68℃退火和延伸，94℃模板变性);
c.适当地降低Mg2+的浓度也可起到降低非特异性扩增可能性的作用;
d.适当地减少反应退火的时间和延伸的时间;
e.适当地减少循环次数也会有效果;
f.可以尝试使用巢式引物PCR(nested primer PCR)。
(4)电泳检测PCR产物出现其它非特异性条带
a.需检查一下引物的3’端是否有连续排列的G或C;
b.可以适当地提高退火温度或直接采用两步温度PCR方法进行扩增;
c.可以降低Taq DNA聚合酶的用量，同时也降低引物的浓度;
d.可以适当地减少退火所用的时间以及延伸反应的时间;
e.可以适当地增加或减少一些Mg2+浓度。
4.假阳性
实验中设立的阴性对照可提示有无假阳性结果出现。如果一次实验中的几个阴性对照中出现一个或几个阳性结果，提示本次实验中其它标本的检测结果可能有假阳性。造成假阳性的原因包括样品污染、扩增试剂污染、扩增产物交叉污染等。常见的污染来源包括实验室环境、加样器、操作中形成的喷雾、DNA抽提仪器、试剂及任何与扩增产物接触的东西。
预防各种污染的措施主要有：(1)工作区隔离。(2)改进实验操作，如在加样过程中避免试剂飞溅、吸头离心管使用前高压处理、试剂分装成小份一次使用后弃去等。(3)操作程序合理化，如后加阳性对照等。
交叉污染的处理方法包括：(1)在DNA模板和多聚酶加入前，紫外线照射反应管内容物以破坏污染的PCR产物。一般选用波长254nm照射30min(Nature, 1990, 34:27)。(2)PCR实验中使用dUTP，而不用dTTP。在扩增前使用UraciⅠN-glycosylase(尿嘧啶糖基化酶)处理可降解交叉污染的PCR产物，而不降解基因组DNA模板，然后热灭活此酶，再进行扩增反应(Gene, 1990, 93: 125)。美国PE公司提供此类试剂盒(PCR carry-over preventionkit)。(3)在PCR反应前加入一种光化学试剂，反应完成后激活该试剂，光化学试剂可交联 DNA链，使之不能再扩增(Nucleic Acids Res, 1991, 19: 99)。
2.2.2.5 PCR技术在分子生药学中的应用
对于生药学家来说，PCR技术已称为他们研究生药的一种崭新而有力的工具。PCR技术在生药学中的应用主要有两方面：①扩增和直接测序或者对属性特异的DNA序列定性以用于系统发育或亲缘关系的分析，也可用于鉴定品种;②通过简单纯化从复杂生物样品的混合物中鉴定病原体和土壤微生物，用于药用植物的基因工程。
PCR实验代测，PCR实验设计，PCR实验-安徽华远 华远主要业务为向大专院校、科研机构，药企、化工企业提供高品质、特殊规格的化学产品和技术解决方案，已经形成了累计服务超过1000家客户，提供高规格产品超过6000种，合作行业和产业伙伴超过1200家的体量和规模，积累了丰富的经验和良好的口碑。基于长期的行业经验和积累，我司已经形成了既能满足研发类客户对产品种类、包装、纯度的特殊要求，也能适应企业从小试、中试到规模化等各个阶段的综合需求的核心能力。
