实验原理：血清蛋白(serum protein)琼脂糖凝胶电泳实验方法
【原理】
琼脂糖(agarose)是经过挑选，以质地较纯的琼脂(agar)作为原料而制成的。琼脂在化学上是由琼脂糖和琼脂胶组成的复合物。琼脂胶是一含有硫酸根和羟基的多糖，它具有离子交换性质，这种性质会给电泳及凝胶过滤以不良的影响。琼脂糖是直链多糖，它由D-半乳糖和3,6-脱水-L-半乳糖的残基交替排列组成。
琼脂糖主要通过氢键而形成凝胶。电泳时因凝胶含水量大(98-99%)，近似自由电泳，因为固体支持物的影响少，故电泳速度快，区带整齐。而且由于琼脂糖不含带电荷的基团，电渗影响很少，是一种较好的电泳材料，分离效果较好。
血清中脂类物质与血清载脂蛋白结合成水溶性的脂蛋白(lipoprotein)形式存在。各种脂蛋白中所含载脂蛋白的种类及数量不同，各种脂蛋白颗粒大小也相差很大，因此，以琼脂糖凝胶为支持物，在电场中可使各种脂蛋白颗粒分离开来。
琼脂糖凝胶电泳分离血清蛋白方法简单。将血清脂蛋白用脂类染料苏丹黑(或油红等)进行预染。再将预染过的血清加样于琼脂糖凝胶板加样槽中，通电后可以看到脂蛋白向正极移动，并分离出几个区带。
正常人血清脂蛋白可出现三条区带，从阴极到阳极依次为β-脂蛋白(最深)，前β-脂蛋白(最浅)及α-脂蛋白(比前β-脂蛋白略深些)，在原点处应无乳糜微粒。有时前β-脂蛋白也显
示不出来。
琼脂糖主要通过氢键而形成凝胶。电泳时因凝胶含水量大(98-99%)，近似自由电泳，因为固体支持物的影响少，故电泳速度快，区带整齐。而且由于琼脂糖不含带电荷的基团，电渗影响很少，是一种较好的电泳材料，分离效果较好。
血清中脂类物质与血清载脂蛋白结合成水溶性的脂蛋白(lipoprotein)形式存在。各种脂蛋白中所含载脂蛋白的种类及数量不同，各种脂蛋白颗粒大小也相差很大，因此，以琼脂糖凝胶为支持物，在电场中可使各种脂蛋白颗粒分离开来。
琼脂糖凝胶电泳分离血清蛋白方法简单。将血清脂蛋白用脂类染料苏丹黑(或油红等)进行预染。再将预染过的血清加样于琼脂糖凝胶板加样槽中，通电后可以看到脂蛋白向正极移动，并分离出几个区带。
正常人血清脂蛋白可出现三条区带，从阴极到阳极依次为β-脂蛋白(最深)，前β-脂蛋白(最浅)及α-脂蛋白(比前β-脂蛋白略深些)，在原点处应无乳糜微粒。有时前β-脂蛋白也显示不出来。
【操作】
1、预染血清 血清 0.2mL中加苏丹黑染色液0.2mL，混合置37℃水浴中染色30分钟，离心(2000转/分)约5分钟。以除去悬浮于血清中染料沉渣。
2、制备琼脂糖凝胶板 将已配制好的0.5%琼脂糖凝胶于沸水浴中加热融化，用吸管吸取凝胶溶液浇注在载玻片上，约3 mL。静置半小时后凝固(天热时需延长，也可放入冰箱中数分钟以加速凝固)。
3、点样 将剪好的滤纸条对折，以折边在距凝胶一端2cm处切一点样口。将毛细管插入预染好的血清中，待吸入部分血清后，取毛细管使其有样品的一端靠于点样口端部，停靠3秒左右。
4、电泳 将凝胶板平放入电泳槽中，使加样端接在阴极一侧，用四层滤纸或纱布做成“引桥”，敷于胶板的两端，各搭住凝胶板约1cm左右，“引桥”的另一端浸于电泳槽内的巴-比妥缓冲液中。接通电源，首先调节电流为3-4mA/凝胶板，电泳10-15分钟;然后调节电流为6-7mA/凝胶板，电泳30-40分钟，即可观察到分离的区带。
5、如果需要保留电泳图谱，可将电泳后的凝胶板(连同载玻片)放入清水中浸泡脱盐2小时，然后放烘箱(80℃左右)中烘干即可。
【试剂】
1、苏丹黑染色液 将苏丹黑B加到无水乙醇中至饱和，摇荡使乙酰化。用前过滤。
2、巴比-妥缓冲液 称取巴比-妥钠15.4g、巴-比妥2.76g及 EDTA0.29g，加水溶解后再加蒸馏水至1000mL(pH为8.6，离子强度0.075)，为电极缓冲液。
3、凝胶缓冲液 取三羟甲基氨基甲烷1.212g、EDTA0.29g及NaCl5.85g，用蒸馏水溶解后，稀释至1000mL，pH为8.6。
4、琼脂糖凝胶 称取琼脂糖0.45 g溶于50 mL凝胶缓冲液中，再加水 50 mL。在水浴中加热至沸，待琼脂糖*溶解后，立即停止加热。
【注意事项】
1、电泳样品应为新鲜的空腹血清。
2、加热溶化琼脂时，须防止水份蒸发过多。琼脂糖凝胶最好随用随制，以免凝胶表面干燥，影响分离效果。
3、制作凝胶板时琼脂糖浓度一般选用0.5%左右为宜，高于1%以上α-脂蛋白部分较紧密，β和前β-脂蛋白部分不够清晰;低于4.5%则凝固性较差，图谱不清。
4、点样口要大小适宜，边缘整齐、光滑，否则会影响电泳图谱。
5、在α-脂蛋白前若出现较浅区带，可列为前α-脂蛋白。
【正常参考范围】
α-脂蛋白 20~30%
β-脂蛋白 20~30%
前β-脂蛋白 0~28%
乳糜微粒(-)
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